resumen guia para estudiantes, Resúmenes de Salud Pública

¡Descarga resumen guia para estudiantes y más Resúmenes en PDF de Salud Pública solo en Docsity! UNIVERSIDAD CATÓLICA SEDES SAPIENTAE FACULTAD DE CIENCIAS Curso: Interacción Fármaco - Nutriente Profesora: Indira Lengua Integrantes: Bravo Rojas Milagros Angelica Chumpitaz Gutiérrez Melannie Ñontol Pinco Geraldine Brigith Parra Tipula Kiara Ospiño Vela Elbis LIMA - PERÚ 2023 Nombre de la práctica de laboratorio Obtención, detección y cuantificación de colorantes Fecha: Semana 4 Lugar Duración 180 minutos Horario Curso Interacción fármaco nutriente Grupo 1 Nº de estudiantes 30 Docente/s Indira Lengua Unidad curricul ar 1 Introducción a la farmacología I. Objetivos de aprendizaje - Extraer y cuantificar colorantes naturales. - Detectar la presencia o ausencia de colorantes artificiales. II. Descripción Actividades/ estación n.º #1 Extracción y cuantificación espectrofotométrica de betalaínas Descripción de las actividades Extracción y cuantificación espectrofotométrica de betalaínas Duración de las actividades (minutos) 30 minutos 4. Tomar 10mL y centrifugar a 3000 rpm por 10 min, recuperar el sobrenadante, en caso necesario filtrar con papel filtro. 5. Obtener el espectro de absorción del sobrenadante en un espectrofotómetro en el intervalo de 400 a 700 nm. 6. Determinar el contenido de betacianinas y betaxantinas midiendo la absorbancia a 538 y 483 nm, respectivamente. Emplear como blanco la solución de metanol al 80%. Realizar las diluciones pertinentes para que el valor de absorbancia sea inferior a 0.6 unidades. 7. Para la conversión de las unidades de absorbancia en unidades equivalentes de concentración utilizar la siguiente expresión: Absorbancia Muestra log 538 / 0.605 ab Log 483 / 0.470 ab 1663.75 1292.5 538 = 0.605 x 1 x 550 x 5/ 60000 x 5 x 1= cc= 5.54 483=0.470 x 1 x 550 x 5 / 60000 x 5 x 1 = cc=4.30 Dónde: B = concentración equivalente de betacianinas o betaxantinas A = absorbancia a 538 nm para betacianinas y 483 nm para betaxantina Fd = factor de dilución al momento de leer en el espectrofotómetro PM = peso molecular (Betanina = 550 g/mol o Indicaxantina = 308 g/mol) V = volumen del extracto e = coeficiente de extinción molar (60,000 L/mol.cm para betaninas y 4,8000 L/mol.cm para betaxantinas) L = longitud de la celda (1 cm) P = peso de muestra (g) Los resultados trabajados en betacianinas nos dieron una A: 538 A: 483 Cc: 5.54 cc:4.30 Los cual remite que la absorbancia varía dependiendo la concentración y la longitud de onda, a mayor concentración mayor absorbancia, la betalaina suele ser trabajada en niveles de absorbancia de 538 a 483 una vez ya ubicada las concentraciones el cual fue comparado con un blaco de alcohol de 80% Materiales necesarios Materiales y equipos: - Matraz erlenmeyer de 250ml c/papel aluminio. - Matraz aforado 50ml c/papel alumninio. - Embudo – Cápsula de porcelana, fondo redondo. – Papel indicador. – Papel filtro – Soporte universal. – Embudo de decantación. – Pipetas de 5ml. – Propipetas. – Beaker de 100ml, 1000ml. – Tubos de ensayo. – Baguetas. – Tiras reactivas. – Pipeta Pasteur separación de las fases. 4. Con ayuda de una pipeta Pasteur colectar la capa superior de hexano que contiene los compuestos liposolubles (anaranjado), depositar en un tubo de vidrio previamente recubierto con papel aluminio y mantener tapado. 5. Obtener el espectro de absorción en un espectrofotómetro UV/Vis en el intervalo de 400 a 700nm, utilizando hexano como blanco. Realizar las diluciones pertinentes para que el valor de absorbancia sea inferior a 0.6 unidades 6. Determinar el contenido de licopeno midiendo la absorbancia a 503 nm con la siguiente ecuación: Abs = 0.698 CC = 9,805 A = absorbancia leída a 503 nm V = volumen total la fase superior (15 mL) PM = peso molecular del licopeno (536.9 g/mol) P = peso de muestra que seutilizó para hacer la extracción (15g) e = coeficiente de extinción molar del licopeno en hexano (17.2 x 104 M/cm) L = longitud de la celda (1 cm) Materiales necesarios Material de la estación 1 Referencia s bibliográfi cas Galicia Cabrera RM. (2009). Extracción de pigmentos carotenoides en jitomate (LycopersiconesculentumMill.) y su aplicación en sistemas alimentarios modelo. Tesis de Doctorado en Biotecnología UAM-I . Sharma SK, Le MM. 1996. Lycopene in tomatoes and tomato pulp fractions. It J Food Sci, 2: 107–113. Actividades/ estación n.º A. #3 Detención de colorantes artificiales Descripción de las actividades Detención de colorantes artificiales Duración de las actividades (minutos) 30 minutos Objetivo Detención de colorantes artificiales Orientación – En un Erlenmeyer de 250 cm3, colocar 50 cm3 de la bebida gaseosa y concentrarlo. – Aproximadamente a la mitad de su volumen. – Agregar 2 cm3 de ácido clorhídrico (comprobar si el medio es ácido valiéndose de un papel tornasol). Estabilizantes E-400 – E-499 Reguladores del pH y Agentes Antigrumos E-500 – E-599 Potenciadores del Sabor E-600 – E-699 Varios E- 900 – E-999 Los aditivos alimentarios se suelen encontrar agrupados en cuatro categorías, que incluyen las 26 clases funcionales que describe la Unión Europea. Estas categorías son: - Modificadores de los caracteres organolépticos: entre ellos están los colorantes, edulcorantes, espesantes, potenciadores del sabor y gelificantes. - Estabilizadores de las características físicas: encontramos los emulgentes, estabilizantes, antiaglomerantes, acidulantes, reguladores del pH, etc. - Inhibidores de alteraciones: éstos son los conservadores, antioxidantes y secuestrantes. - Mejoradores y correctores de los alimentos: como, por ejemplo, los mejoradores de la panificación, correctores de la vinificación o reguladores de la maduración. Entonces, los aditivos cumplen varias funciones útiles en los alimentos, que a menudo damos por hecho. Los alimentos están sometidos a muchas condiciones medioambientales que pueden modificar sus características originales, como los cambios de temperatura, la oxidación de sus componentes y la exposición a microorganismos. Los aditivos alimentarios tienen un papel fundamental a la hora de mantener las cualidades y características de los alimentos que exigen los consumidores, y hacen que los alimentos continúen siendo seguros, nutritivos y apetecibles. La utilización de aditivos está estrictamente regulada y los criterios que se tienen en cuenta para su uso es que tengan una utilidad demostrada desde el punto de vista tecnológico, sean seguros en términos de inocuidad y no se utilicen para la fabricación de productos fraudulentos al consumidor. 3. ¿Qué información se obtiene a partir de los espectros de absorción y reflectancia? Espectros de absorción Instrumento que mide las cantidades relativas de la luz de diferentes longitudes de onda son absorbidas y transmitidas por una solución. Mediante la absorbancia muestra para cada longitud de onda la relación entre la intensidad de la luz reflejada y la luz incidente, medida con respecto a una referencia blanca estándar a partir de la fórmula hemos cuantificado. 4. ¿Qué iluminantes y observadores se pueden emplear en la determinación del color? y ¿cuál es el criterio de selección? El espectrofotómetro y máquina Centrífuga 5. ¿Por qué es necesario desengrasar la lana? Es necesario desengrasar la lana para que de esta manera el colorante pegue fácilmente ya que dentro de sus compuestos contiene grasa. 6. ¿Cuál es la función del HCl en la extracción y detección de colorantes? Junto la gaseosa + ácido acético, busca desengrasar cantidad de la lana. 7. ¿Por qué los colorantes artificiales quedaran al final de la prueba en la lana? Porque los artificiales químicos están compuestos por mayor cantidad de químicos. 8. ¿Qué otros métodos existen para identificar colorantes en alimentos? Existe una amplia gama de métodos analíticos para la detección de colorantes sintéticos como la cromatografía de líquidos de altas prestaciones, cromatografía de líquidos capilar cromatografía en espectrofotometría voltámetro inmunoensayos.